实验室抗体标志流程

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实验室抗体标志流程

1、细胞膜表面标志染色

1.1根据确定的染色抗体及实验室准备试管,并标记

1.2在每支试管中加入5*1o^5 细胞与管某某

1.3在每支试管中加入5ul(参考实际说明)不同荧光速标记的抗体,与细胞悬液充分混匀,置室温,避光15min.

1.4在每管细胞中加入1*溶血素2ml,充分混匀细胞,置室温,避光10min. 1.5离心1050rpnr5min,弃上清。

1.6加入pbs2ml后再混匀,离心1050rpnr5min,弃上清混匀细胞

1.7 加入0.5mlpbs后再混匀,上机检测

注意:如果非血液标本含有较多红细胞,也要做红细胞裂解,我室标本常规采用先做膜表面标记后溶红细胞的的方法、,如果在染色之前裂解红细胞,需要注意:a 裂解某某不会破坏细胞的抗原性.,b为了保证抗体结合的细胞动力学不受影响,需充分洗涤2次、确保完全去除细胞裂解某某。c裂解某某中不含固定剂成分,(固定剂会改变细胞活性,做表面标芯分析的时候产生可疑结果。)BD的市售红细胞解某某含固定剂

2胞膜和细胞内标志同时染色

2.1如染颗粒酶,穿孔素抗体,用BD公司的穿孔剂(perm2),按以下步骤进行:

(1)如同时染细胞表面标志,在每支试管中加入5ul(参考试剂说明)不同散设光谱荧光素标记的抗体,与细胞血液充分混匀。置室温,避光15分钟。

(2)在每管细胞中加入1倍的溶血索2ml,充分混匀细胞,置室温,避光10分钟。

(3)离心1050rpm5分钟,弃上清,混匀细胞

(4)加入PBS2ml后再混匀,离心1050rpm5分钟,弃上清,混匀细胞。

(5)加入1*BD穿孔剂0.5ml后用力振荡,置室温,避光10分钟。

(6),加入PBS2ml离心1050rpm5分钟,弃上清,混匀细胞。

(7)加需胞内染色的抗体,置室温,避光15分钟,混匀细胞。

(8)离心1050rpm5分钟,弃上清,混匀细胞。

(9)加入PBS2ml,离心1050rpm5分钟,弃上清,混匀细胞。

(10)加入PBS2ml,离心1050rpm5分钟,弃上清,混匀细胞。

(11)加0.5mlPBS 后再混匀,上机检测

2.2 ckappak/clambda,用库尔特破膜剂,按以下步骤进行:

(1)如同时染细胞表面标志,在每支试管中加入5ul(参考试剂说明)不同散射光谱荧光素标记的抗体,与细胞混悬液充分混匀,置室温,避光15分钟。

(2)按原加入标本量的2倍体积(约100ul)加入1号试剂,置室温,避光15分钟,

(3)加PBS2ml,离心1050rpm5分钟,用吸管沿液面吸掉上清,轻混匀

(4)同量加入2号试剂(约100ul)请混匀。置室外,避光5min

(5)加入胞内染色的抗体,置室温,避光15min,混匀细胞

(6)加入PBS2ml离心1050rpm5min,弃上清,混匀细胞。

(7)加入PBS2ml再混匀、离心1050rpm5min,弃上清,混匀细胞。

(8)加入PBS0.5ml后再混匀。上机检测,

3其他胞内抗体(如MpO、Kf67、TDT、lgM.CD3、cyclinD1、bcl-2等)使用BD破膜剂

3.1取5*10^5细胞,分别加入5ull(参考剂量)包膜标记抗体,避光室温孵育15min

3.2加入100ul破膜剂A,避光室温孵育5min

3.3加入1*溶血素2ml、充分混匀细胞,置室温,避光10min。离心1050rpm5min,弃上清,

3.4加入50ul破裂剂B,加入胞浆抗体,避光室温孵育15min

3.5加入PBS2ml再混匀,离心1050rpm5min,弃上清,混匀细胞,加0.5ml 内容过长,仅展示头部和尾部部分文字预览,全文请查看图片预览。 lPBS,混匀,37度孵育5min

(2) 离心1050rpm5min,弃上清混匀细胞

(3)加入PBS2ml后再混匀,37度孵育5min

(4)离心1050qpm5min,弃上清混匀细胞

(5)按照胞膜染色步骤进行

4.4.2胞浆染色

(1) 取5*10^5细胞,加入2mlPBS,混匀,37度孵育5min

(2) 离心1050rpm5min,弃上清混匀细胞

(3)加入PBS2ml后再混匀,37度孵育5min

(4) 离心1050rpm5min,弃上清混匀细胞

(5)胞膜和胞浆免疫球蛋白、轻链按照库尔特穿孔剂胞膜+胞浆染色步骤进行CD41a、CD61染色按照BD公司胞膜+胞浆染色步骤进行。

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